Tierexperimentelle Versuche (insbesondere Blutentnahme, Exzision von Organen, murine in vivo Operationsmodelle, murines ex vivo Herzmodell nach Langendorff, in situ Untersuchung an isolierten Organen im Organbad, TAC-Modell, Xenograft, Substanzapplikation, Echokardiographie, Volumen-Druck-Katheter-Messungen)
Gewinnung und Aufarbeitung von Blut-, Plasma- und Gewebeproben (murin, human)
Molekularbiologische, proteinbiochemische und histologische Experimente (insbesondere Genexpressionsanalysen, Klonierung, in situ Hybridisierung, Proteinbestimmung, SDS-PAGE, Blue-Native-Page, 2D-Gele, Western Blot, ELISA, Aktivitätsassays, Immunhistochemie, Gewebefärbungen, FACS-Analysen)
Verschiedene Mikroskopie-Techniken
Zell- und Mitochondrienisolierung
Kultivierung von Zelllinien und Primärzellen
Gasphasen-Chemilumineszenz-Detektion und HPLC-Technik – NO-Analytik
Mithilfe bei Tierexperimenten
Verfassen von Standardarbeitsanweisungen
Betreuung von Geräten und Proben-Management
Allgemeine Labororganisation
Ihr Profil:
Erfolgreich abgeschlossene Ausbildung zur Biologisch-technischen Assistenz / Medizinisch-technischen Assistenz
Tierexperimenteller Kurs (FELASA B)
Kenntnisse in den oben genannten tierexperimentellen Methoden
Kenntnisse in den gängigen zellbiologischen, biochemischen, immunologischen, mikrobiologischen und molekularbiologischen Labormethoden bzw. Bereitschaft zur Weiterbildung
Gute Organisationsfähigkeit, Fähigkeit zur konstruktiven Teamarbeit
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